本研究通过建立完善的细胞器超纯化体系,系统绘制和解析了高维度、多层级、跨区域时空动态调控细胞活动图谱及新机制、新范式,拓展了在癌症生物学过程中新视觉。
In this application, through the establishment of a complete organelle-related affinity purification system, we systematically mapped the lncRNAs enriched in various organelles and precisely explored the novel mechanism and paradigm of this organelle-enriched lncRNAs in dynamically regulating multiple cellular processes including signaling, which expanded the novel insight of lncRNAs in cancer biology.
一、科普讲解:生命“暗物质”有了“星空图”
2003年人类基因组计划便绘制了人类基因组图谱,然而诸多人类疾病的基因联系仍未明晰,这为人类“基因组字典”留下了研究空白。近年研究揭示人类基因组80%以上的转录产物并不编码蛋白,为非编码RNA,其功能大量未知,堪称生命“暗物质”。其中长链非编码RNA(LncRNA)是数量最多的类型。
坚信“天生我材必有用”,我们对非编码RNA组成的“无字天书”充满了兴趣。经过一系列努力,我们前期成功鉴定并命名了肿瘤发生相关LncRNA CamK-A,为肿瘤诊治提供了潜在新靶标 (Sang et al. Molecular Cell, 2018)。这一发现使我们相信对该“无字天书”的破译或将是对生命科学理论的重要补充,值得深入研究。
细胞内区室化是真核细胞的基本特征之一,核酸等生物分子通过区室化分布介导各细胞器的结构与功能。我们从LncRNA亚细胞空间定位与功能的角度入手,经过一系列摸索,创建了细胞器免疫亲和分离纯化技术体系,突破了常规细胞器分离技术分辨率瓶颈,结合RNA组学、生物信息学分析,成功绘制了人类细胞器LncRNA图谱,并通过细胞、生化实验发现这些LncRNA能够介导细胞器结构组成及代谢功能调控。进一步,我们从中揭示了一个细胞能量“发电厂”线粒体细胞器定位的LncRNA GAS5通过充当细胞“低电量模式”分子开关,介导能源匮乏条件下线粒体“功率”限制,维持细胞代谢稳态。GAS5在肿瘤组织中异常下调,满足肿瘤恶性进展。该特性赋予了GAS5作为肿瘤诊断标志物的转化潜力(图1)。
该研究为生物理论、人类疾病研究提供了崭新视角,并已于2021年1月以封面论文刊发在细胞代谢顶级期刊Nature Metabolism上。
二、新闻报道:Cell Research | 林爱福团队报道LncRNA通过液-液相分离机制调控Hippo信号活化
细胞内蛋白质、核酸等生物大分子可通过液-液相分离(LLPS)形成液滴样无膜结构,为各种生命活动提供区室化反应空间,提高各种生化反应效率[1]。LLPS受多价弱相互作用驱动,这类作用力来自于蛋白内在无序区(IDR)/类朊病毒病序列(PrLD)、支架DNA或RNA分子。长链非编码RNA(Long non-coding RNA, LncRNA)可作为支架分子促进和维持无膜结构的形成,对基因转录等重要生物学事件发挥调控作用,如应激时神经元细胞中LncRNA NEAT1可与TDP-43共定位并促进TDP-43蛋白的相分离,使TDP-43在细胞应激时在细胞核内形成具有细胞保护功能的无膜、液滴状、动态可逆的核颗粒[2]。
目前研究证明LncRNA在细胞信号调控中发挥重要调控功能。浙江大学林爱福等课题组在内的一系列前期研究,发现细胞膜脂结合LINK-A促进了细胞质膜PIP3-AKT信号转导[3],细胞质CamK-A介导了Ca2+信号与NF-κB信号交互[4],细胞核BCAR4介导了Hedgehoge-Hippo信号转录协同[5],此外,林爱福团队近期在Nature Metabolism发表论文,通过建立细胞器免疫亲和纯化体系,绘制了细胞器LncRNA图谱,并从中揭示了线粒体LncRNA GAS5介导三羧酸循环代谢区室解离中的重要调控作用(详见BioArt报道:专家点评Nat Metab | 林爱福组建立细胞器非编码RNA图谱并解析其功能)[6]。深入阐明细胞质LncRNAs调控细胞信号转导的作用方式和机理机制,将丰富人们对细胞信号转导的认知,为揭示肿瘤等恶性疾病发生提供理论指导和临床借鉴。
2021年7月15日,浙江大学生命科学学院林爱福课题组在Cell Research杂志在线发表题为 A Phosphatidic Acid-binding LncRNA SNHG9 Facilitates LATS1 Liquid-liquid Phase Separation to Promote Oncogenic YAP Signaling 的研究论文。该研究发现磷脂酸结合型LncRNA SNHG9通过调控Hippo信号节点激酶LATS1相分离,继而调控YAP肿瘤信号活化和肿瘤发生发展。该文阐明了细胞质LncRNA通过介导节点激酶分子相分离以调控细胞信号转导的新机制,为肿瘤诊治提供理论依据和潜在靶标。
该研究通过转录组测序和生信分析,发现了一系列在乳腺癌中高表达的LncRNAs,其中SNHG9(small nucleolar RNA host gene 9)表达显著上调,提示SNHG9可能参与乳腺癌的恶性进展。通过RNA pulldown和Lipid dot blot等实验发现,SNHG9可与磷脂酸(Phosphatidic acid,PA)和Hippo节点激酶LATS1直接结合, PA结合SNHG9可进一步抑制LATS1-MOB1复合体的形成,继而下调LATS1激酶活性和YAP磷酸化水平,从而促进YAP靶基因的转录和乳腺癌细胞增殖。
在借助免疫荧光观察SNHG9过表达细胞系中LATS1蛋白亚细胞定位时,研究人员发现与蛋白发生相分离形成的斑点类似,LATS1蛋白在细胞质中形成液滴状的的亮斑,提示LATS1在该条件下可能发生了液-液相分离。通过生物信息学分析LATS1蛋白的氨基酸序列,发现LAST1的N端含有PrLD序列,进一步支持了LATS1可能发生液-液相分离的猜想。研究人员截取已报道的可发生相分离蛋白的内部无序区(IDR),置换到LATS1的PrLD序列,发现截去PrLD的LATS1不能发生相分离,而置换其它蛋白IDR恢复了LATS1蛋白的相分离能力,证实PrLD序列介导了LATS1蛋白发生相分离。以此为突破口,研究人员通过一系列分子生化实验,证实SNHG9可通过促进LATS1相分离来抑制LATS1的激酶活性。
综上,该研究提出了SNHG9参与Hippo信号转导的工作模型:PA结合的SNHG9与LATS1形成复合物,阻止MOB1和LATS1互作、抑制LATS1的激酶活性;另一方面,LATS1蛋白的PrLD序列可驱动LATS1相分离的发生,SNHG9则作为支架招募LATS1蛋白聚集并提高LATS1蛋白的局部浓度、促进LATS1相分离的发生并抑制其激酶活性,从而促进YAP的入核和转录活性(图2)。该研究揭示了SNHG9-LATS1-PA通过液-液相分离机制调控Hippo信号通路和乳腺癌的发生发展,有助于更好地理解液-液相分离参与信号转导和疾病发生发展的作用和机制,并为癌症等人类重大疾病诊治提供了新靶标。
参考文献:
1. Alberti, S., Gladfelter, A., and Mittag, T. (2019). Considerations and Challenges in Studying Liquid-Liquid Phase Separation and Biomolecular Condensates. Cell 176, 419-434.
2. Wang, C., Duan, Y., Duan, G., Wang, Q., Zhang, K., Deng, X., Qian, B., Gu, J., Ma, Z., Zhang, S., et al. (2020). Stress Induces Dynamic, Cytotoxicity-Antagonizing TDP-43 Nuclear Bodies via Paraspeckle LncRNA NEAT1-Mediated Liquid-Liquid Phase Separation. Mol Cell 79, 443-458 e447.
3. Lin, A., Hu, Q., Li, C., Xing, Z., Ma, G., Wang, C., Li, J., Ye, Y., Yao, J., Liang, K., et al. (2017). The LINK-A lncRNA interacts with PtdIns(3,4,5)P3 to hyperactivate AKT and confer resistance to AKT inhibitors. Nat Cell Biol 19, 238-251.
4. Sang, L.J., Ju, H.Q., Liu, G.P., Tian, T., Ma, G.L., Lu, Y.X., Liu, Z.X., Pan, R.L., Li, R.H., Piao, H.L., et al. (2018). LncRNA CamK-A Regulates Ca(2+)-Signaling-Mediated Tumor Microenvironment Remodeling. Mol Cell 72, 71-83 e77.
5. Zheng, X., Han, H., Liu, G.P., Ma, Y.X., Pan, R.L., Sang, L.J., Li, R.H., Yang, L.J., Marks, J.R., Wang, W., et al. (2017). LncRNA wires up Hippo and Hedgehog signaling to reprogramme glucose metabolism. EMBO J 36, 3325-3335.
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