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项目名称:细胞器长链非编码RNA图谱绘制及功能解析

项目简介

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本研究通过建立完善的细胞器超纯化体系,系统绘制和解析了高维度、多层级、跨区域时空动态调控细胞活动图谱及新机制、新范式,拓展了在癌症生物学过程中新视觉。

In this application, through the establishment of a complete organelle-related affinity purification system, we systematically mapped the lncRNAs enriched in various organelles and precisely explored the novel mechanism and paradigm of this organelle-enriched lncRNAs in dynamically regulating multiple cellular processes including signaling, which expanded the novel insight of lncRNAs in cancer biology.

 

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项目团队

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林爱福,国家高层次人才、浙江大学百人计划引进人才、浙江省杰出青年基金获得者、浙江省特聘专家。浙江大学生命科学学院研究员,博士生导师,浙江大学一带一路国际医学院副院长,浙江大学遗传与再生生物学研究所副所长,浙江省细胞与基因工程重点实验室副主任,教育部生命系统稳态与保护重点实验室PI,浙江省细胞生物学会常务理事,中国细胞生物学会医学细胞分会副秘书长。其研究团队主要从事肿瘤细胞生长分化信号通路的分子基础研究和临床转化应用研究,重点关注长链非编码RNAs在细胞信号转导过程中的调节功能及其在肿瘤发生中的分子机制,探索并发现新的肿瘤发生发展调控途径与规律。围绕上述领域开展了一系列创新性探索研究,系统地研究了LncRNAs的细胞空间维度层级分布及其功能调控,取得了一批重要学术成果。相关研究发表在CellCell Research(通讯作者)、Nature Cell BiologyNature Metabolism(通讯作者)、Molecular Cell(通讯作者)、The EMBO Journal(共同通讯作者,主通讯)、Cancer ResearchOncogene等重要国际期刊,针对相关研究方向申请专利多项。
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资料图片

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细胞器长链非编码RNA图谱绘制及功能解析

 

图1

 

图2

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科学解读

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一、科普讲解:生命暗物质有了星空图

2003年人类基因组计划便绘制了人类基因组图谱,然而诸多人类疾病的基因联系仍未明晰,这为人类基因组字典留下了研究空白。近年研究揭示人类基因组80%以上的转录产物并不编码蛋白,为非编码RNA,其功能大量未知,堪称生命暗物质。其中长链非编码RNALncRNA)是数量最多的类型。

坚信天生我材必有用,我们对非编码RNA组成的无字天书充满了兴趣。经过一系列努力,我们前期成功鉴定并命名了肿瘤发生相关LncRNA CamK-A,为肿瘤诊治提供了潜在新靶标 (Sang et al. Molecular Cell, 2018)。这一发现使我们相信对该无字天书的破译或将是对生命科学理论的重要补充,值得深入研究。

细胞内区室化是真核细胞的基本特征之一,核酸等生物分子通过区室化分布介导各细胞器的结构与功能。我们从LncRNA亚细胞空间定位与功能的角度入手,经过一系列摸索,创建了细胞器免疫亲和分离纯化技术体系,突破了常规细胞器分离技术分辨率瓶颈,结合RNA组学、生物信息学分析,成功绘制了人类细胞器LncRNA图谱,并通过细胞、生化实验发现这些LncRNA能够介导细胞器结构组成及代谢功能调控。进一步,我们从中揭示了一个细胞能量发电厂线粒体细胞器定位的LncRNA GAS5通过充当细胞低电量模式分子开关,介导能源匮乏条件下线粒体功率限制,维持细胞代谢稳态。GAS5在肿瘤组织中异常下调,满足肿瘤恶性进展。该特性赋予了GAS5作为肿瘤诊断标志物的转化潜力(图1)。

该研究为生物理论、人类疾病研究提供了崭新视角,并已于20211月以封面论文刊发在细胞代谢顶级期刊Nature Metabolism上。

二、新闻报道:Cell Research | 林爱福团队报道LncRNA通过液-液相分离机制调控Hippo信号活化

细胞内蛋白质、核酸等生物大分子可通过液-液相分离(LLPS)形成液滴样无膜结构,为各种生命活动提供区室化反应空间,提高各种生化反应效率[1]。LLPS受多价弱相互作用驱动,这类作用力来自于蛋白内在无序区(IDR)/类朊病毒病序列(PrLD)、支架DNA或RNA分子。长链非编码RNA(Long non-coding RNA, LncRNA)可作为支架分子促进和维持无膜结构的形成,对基因转录等重要生物学事件发挥调控作用,如应激时神经元细胞中LncRNA NEAT1可与TDP-43共定位并促进TDP-43蛋白的相分离,使TDP-43在细胞应激时在细胞核内形成具有细胞保护功能的无膜、液滴状、动态可逆的核颗粒[2]

目前研究证明LncRNA在细胞信号调控中发挥重要调控功能。浙江大学林爱福等课题组在内的一系列前期研究,发现细胞膜脂结合LINK-A促进了细胞质膜PIP3-AKT信号转导[3],细胞质CamK-A介导了Ca2+信号与NF-κB信号交互[4],细胞核BCAR4介导了Hedgehoge-Hippo信号转录协同[5],此外,林爱福团队近期在Nature Metabolism发表论文,通过建立细胞器免疫亲和纯化体系,绘制了细胞器LncRNA图谱,并从中揭示了线粒体LncRNA GAS5介导三羧酸循环代谢区室解离中的重要调控作用(详见BioArt报道:专家点评Nat Metab | 林爱福组建立细胞器非编码RNA图谱并解析其功能)[6]。深入阐明细胞质LncRNAs调控细胞信号转导的作用方式和机理机制,将丰富人们对细胞信号转导的认知,为揭示肿瘤等恶性疾病发生提供理论指导和临床借鉴。

2021715日,浙江大学生命科学学院林爱福课题组在Cell Research杂志在线发表题为 A Phosphatidic Acid-binding LncRNA SNHG9 Facilitates LATS1 Liquid-liquid Phase Separation to Promote Oncogenic YAP Signaling 的研究论文。该研究发现磷脂酸结合型LncRNA SNHG9通过调控Hippo信号节点激酶LATS1相分离,继而调控YAP肿瘤信号活化和肿瘤发生发展。该文阐明了细胞质LncRNA通过介导节点激酶分子相分离以调控细胞信号转导的新机制,为肿瘤诊治提供理论依据和潜在靶标。

该研究通过转录组测序和生信分析,发现了一系列在乳腺癌中高表达的LncRNAs,其中SNHG9small nucleolar RNA host gene 9)表达显著上调,提示SNHG9可能参与乳腺癌的恶性进展。通过RNA pulldownLipid dot blot等实验发现,SNHG9可与磷脂酸(Phosphatidic acidPA)和Hippo节点激酶LATS1直接结合, PA结合SNHG9可进一步抑制LATS1-MOB1复合体的形成,继而下调LATS1激酶活性和YAP磷酸化水平,从而促进YAP靶基因的转录和乳腺癌细胞增殖。

在借助免疫荧光观察SNHG9过表达细胞系中LATS1蛋白亚细胞定位时,研究人员发现与蛋白发生相分离形成的斑点类似,LATS1蛋白在细胞质中形成液滴状的的亮斑,提示LATS1在该条件下可能发生了液-液相分离。通过生物信息学分析LATS1蛋白的氨基酸序列,发现LAST1的N端含有PrLD序列,进一步支持了LATS1可能发生液-液相分离的猜想。研究人员截取已报道的可发生相分离蛋白的内部无序区(IDR),置换到LATS1的PrLD序列,发现截去PrLD的LATS1不能发生相分离,而置换其它蛋白IDR恢复了LATS1蛋白的相分离能力,证实PrLD序列介导了LATS1蛋白发生相分离。以此为突破口,研究人员通过一系列分子生化实验,证实SNHG9可通过促进LATS1相分离来抑制LATS1的激酶活性。

综上,该研究提出了SNHG9参与Hippo信号转导的工作模型:PA结合的SNHG9LATS1形成复合物,阻止MOB1LATS1互作、抑制LATS1的激酶活性;另一方面,LATS1蛋白的PrLD序列可驱动LATS1相分离的发生,SNHG9则作为支架招募LATS1蛋白聚集并提高LATS1蛋白的局部浓度、促进LATS1相分离的发生并抑制其激酶活性,从而促进YAP的入核和转录活性(图2)。该研究揭示了SNHG9-LATS1-PA通过液-液相分离机制调控Hippo信号通路和乳腺癌的发生发展,有助于更好地理解液-液相分离参与信号转导和疾病发生发展的作用和机制,并为癌症等人类重大疾病诊治提供了新靶标。 

参考文献:

1. Alberti, S., Gladfelter, A., and Mittag, T. (2019). Considerations and Challenges in Studying Liquid-Liquid Phase Separation and Biomolecular Condensates. Cell 176, 419-434.

2. Wang, C., Duan, Y., Duan, G., Wang, Q., Zhang, K., Deng, X., Qian, B., Gu, J., Ma, Z., Zhang, S., et al. (2020). Stress Induces Dynamic, Cytotoxicity-Antagonizing TDP-43 Nuclear Bodies via Paraspeckle LncRNA NEAT1-Mediated Liquid-Liquid Phase Separation. Mol Cell 79, 443-458 e447.

3. Lin, A., Hu, Q., Li, C., Xing, Z., Ma, G., Wang, C., Li, J., Ye, Y., Yao, J., Liang, K., et al. (2017). The LINK-A lncRNA interacts with PtdIns(3,4,5)P3 to hyperactivate AKT and confer resistance to AKT inhibitors. Nat Cell Biol 19, 238-251.

4. Sang, L.J., Ju, H.Q., Liu, G.P., Tian, T., Ma, G.L., Lu, Y.X., Liu, Z.X., Pan, R.L., Li, R.H., Piao, H.L., et al. (2018). LncRNA CamK-A Regulates Ca(2+)-Signaling-Mediated Tumor Microenvironment Remodeling. Mol Cell 72, 71-83 e77.

5. Zheng, X., Han, H., Liu, G.P., Ma, Y.X., Pan, R.L., Sang, L.J., Li, R.H., Yang, L.J., Marks, J.R., Wang, W., et al. (2017). LncRNA wires up Hippo and Hedgehog signaling to reprogramme glucose metabolism. EMBO J 36, 3325-3335.

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